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更新時間:2022-07-11 10:08:16瀏覽次數:653次
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日本On-chip無損傷分選無污染分選
傳統的細胞分選通過Jet-in-Air方式高速分離細胞,但會對細胞產生一定的損害,對研究細胞原本的性能及特性造成很大的不便。 例如,在干細胞和神經細胞的研究中,分選后得到的細胞無法進行培養的案例時有發生。
日本On-chip生物技術有限公司針對以往傳統流式分選的弊端,于2012年推出了一款對細胞無損傷,確保臨床應用的無污染,可以無菌處理操作的流式細胞儀(On-Chip Sort)。 這款小型的儀器使用微流控芯片模塊,利用空氣壓力控制,對模塊內的樣品流進行細胞分離,最多配置3激光6熒光。以低壓對細胞進行分選,從而實現無損傷分離。對于易損傷的神經細胞,在使用此裝置進行分選以后,仍然可以充分保持分化功能。另外,由于使用一次性交換型模塊,各個樣品間保證無污染,也無需清洗流路通道,即使長時間不使用的狀態,只要拿一個新的篩選模塊,就立即可以開始使用,簡單方便。
其創新性和實用性On-chip Sort在2013年10月獲得了東京都創新技術優勝獎。
使用一次性交換型微流控芯片模塊分選
分選時對鞘液沒有要求(可使用海水、培養液等)
對細胞進行無損傷分選
無污染分選(可放置在生物安全柜中)
最多可配置3激光6熒光(405nm,488nm,561nm,637nm,785nm)
操作簡單,免校正光路和液流
易維護,無需清洗保養
從On-chip Flow(分析型)可直接升級為On-chip Sort(分選型)
On-chip Flow
On-chip Sort
光學系統
激光器
最多配置3激光(405nm、488nm、561nm、637nm、785nm)
檢測參數
前向散射光(FSC),側向散射光(SSC),6PMT(最多10參數)
檢測靈敏度
FSC < 0.5um,SSC < 1.0um
熒光靈敏度
< 200 MESF FITC
數據分析
4個動態范圍,18bit
脈沖分析
高度、面積、寬度
檢測波長
FL1(445/20nm), FL2(543/22nm), FL3(591.5/43nm) FL4(607/24nm), FL5(676/37nm), FL6( >710nm)
液流系統
流動室芯片
可更換的微流控芯片
芯片材料
丙烯酸樹脂
液流通道大小
80μm × 50μm
80μm × 80μm
流速
500~2000 mm/sec
500mm/sec
鞘液
含有FBS的培養基也可
樣品體積
10~300ul
10~100ul
鞘液體積
1~3ml
分析和分選
分選方法
—
模塊內流體推送方式
純度
>95%(取決于細胞濃度)
得率
>80%
細胞損傷
無
交叉污染
是否無菌
壓力
0.3~3PSI
0.3PSI
檢測速度
4000 events/sec
分選速度
20targets/s
開機
幾分鐘
5min
關機
10s (清洗不是必要程序)
安全性
氣溶膠產生
大小和重量
大小
(W*H*W,mm)
520*330*390
620*330*390
重量(kg)
35kg
45kg
PC和軟件
PC
筆記本
OS
Windows7,64bit
數據格式
自有格式以及FCS 3.0
包括,但不限于血液中的癌細胞CTC,神經細胞,細菌的存活數量,微生物,霉菌,精子,蛋白質,淋巴腺,系統單元(乳齒的齒髓),再生細胞(iPS ES細胞)。
※獲得諾貝爾醫學獎的京都大學iPS研究院等多數客戶在使用
1. 神經干細胞無損傷分選培養再驗證對比
傳統分選與on-chip分選的神經細胞,經過7天的培養對比觀察,on-chip分選出的神經細胞的生理特性與未分選之前保持高度一致。
2. 牙髓干細胞無損傷分選
來源于退出齒的牙髓(DPSC),牙周韌帶(PDLSC),牙囊(DFSC),和根尖乳頭(APSC),比骨髓干細胞(BMSC)的四種間充質干細胞,相對于骨髓干細胞來說具有更強的增殖能力和多能干性,因此是一種被證明的更適于再生醫學的干細胞,通過On-chip sort分選儀獲取來源于硬組織的細胞,之后移植了從撤出齒與骨髓來源的人類間質干細胞的四種干細胞。所得到的細胞仍然保持干細胞的特性,驗證了on-chip對干細胞無損傷分選的應用。
3. 無以倫比的循環腫瘤細胞 CTC精確分選
On-chip分選儀因其*的性能,可被用于細胞治療及細胞診斷, 能夠精確檢測和分離循環腫瘤細胞;用on-chip對各種癌癥病人超低量血液中的CTC進行分離,分選后的細胞可用于培養跟蹤及優化選擇的藥物和分析基因變異,區別于CellSearch,isoflux等分選方式,On-chip采用CD45-陰性排除法,不依賴于EpCAM,綜合CK標記 ,對 KATO-III,A549,PC-14類CTC識別及捕獲,準確率分別高達93.8±5.5%,82.4±8.5%,96.0±8.5%,相對Cellsearch的74.7%,28.8%0.0%,on-chip的無損分選技術對CTC的分選精確度有了質飛躍性 。
4. 精子分選無損傷分選
用常規的流式細胞儀檢測,在通過噴嘴時,精子的尾巴易纏繞,無法達到單細胞檢測;而且溫度的變化,精子易失活;分選時,精子頭和尾方向不一致,有可能無法包裹在同一個液滴中,電荷分選受影響較大。On-chip無損傷分選技術,采用微流控低壓分選,可精確無損傷分選活性精子。
精子經PI(只能染死細胞)和SYTO9(可以染活細胞和死細胞)染色后分選。分選活的精子(PI-SYTO9+)可在收集槽中觀測。
5. 血細胞分選----形態保存完好比較
On-chip分選出的粒細胞相對傳統分選方式,細胞形態保留完好,進一步證實On-chip的在血細胞臨床領域的無損傷分選的可靠性。
6. 高鹽濃度培養的牡蠣派琴蟲分選
牡蠣派琴蟲適合在高鹽濃度下生存,改變環境,活性大受影響,利用On-chip無損分選技術及多種鞘液可選的特性,對比原始培養液及PBS做鞘液分選結果,培養后1h用PI染色做活性鑒定,結果顯示原始培養液分選獲得細胞無損傷,而PBS分選活性極大降低。驗證了on-chip在海洋及水質監測領域的應用。
Collaboration with Dr. Hirokazu SAKAMOTO, the Univ. of Tokyo
7. 酵母細胞的活/死細胞進行鑒定和分選
酵母細胞以不同的加熱時間進行處理,經SYTO-9和PI染色后,在on-ship sort上檢測與分選,On-chip Sort 能夠清楚的識別活細胞和死細胞群;對經加熱處理40min的細胞樣品分選活和死的細胞群,并且在培養皿中進行培養。死細胞沒有長出克隆,而活細胞長出了40個克隆。充分證實了On-chip Sort分選的準確性。
1 分選老鼠的胎兒腦部海馬神經細胞
使用傳統的流式細胞儀和On-chip Sort對分選前后的細胞進行培養,分選后使用PI染色發現細胞沒有什明顯差別,但3天后細胞的分化增值出現差異化。
圖1 神經細胞的無損傷分選
傳統的流式細胞儀分選的細胞在后續培養中沒有形成軸突,Onchip Sort處理過的細胞和未做分選處理的細胞一樣形成軸突 。
本研究是和東京工科大學的鈴木郁郎先生共同研究的成果。
2 精子分選
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